Microstructure of the fruit was mea

Microstructure of the fruit was measured according to the re-
ported method (Tironi et al., 2007), with some modifications.
At 20

C, frozen litchi samples (pericarp/pulp) collected from each
storage time (1 day, 60 days, 180 days) were cut into small pieces
(approximately 4  4  8 mm). These samples were then placed on
the specimen plates in the chamber of a microtome (Leica CM-
1900, Germany, equipped with a freezing system) at 25

C, then
were coated with Tissue Freezing Medium (TFM, Leica Microscopic
Systems Inc., Germany) layer by layer, followed by cryofixation for
2 h. The fresh litchi samples (pericarp/pulp) were cut into small
pieces (approximately 4  4  8 mm) in a room at 4

C, and put into
ethanol solution (13e17 mol/L) for gradient dehydration (1 h/
gradient). After that they were sealed in a glass bottle filled with
glycerol solution (10 mol/L) for 3 h. Bubbles in the bottles were
periodically removed using a microsyringe, and these samples were
placed overnight at 20

C. On the second day the samples were
coated with TFM layer by layer in the chamber of the microtome,
until the cryofixation process (2 h) was complete.
After cryofixation, 3e5 tissue sections (20
m
m) were obtained
from IF, AF and fresh litchi samples using the microtome. These
tissue sections were placed on glass slides fixed in methanol for
30 s, and then washed gently with distilled water, followed by
staining with toluidine blue (0.1 g/L) for 5e10 s, washed again and
air dried. Finally the microstructure of litchi tissue sections (peri-
carp/pulp) was observed in a microscope equipped with a CCD RGB
camera (MACC-C71, Sony, Japan).

結果 (繁體中文) 1:

水果的微觀結構進行了測定 re-移植的方法 （在他看來 et al.，2007年），與一些改裝。在 20C，凍結從每個收集的樣品荔枝 （果皮/漿）存儲時間 （1 天、 60 天、 180 天） 被切成小塊(約 4  4  8 毫米)。這些樣品被放上在切片 （徠卡釐米-商會標本板1900 年，德國，配備了凍結系統） 在 25C 然後外塗組織凍結培養基 （TFM，徠卡顯微系統公司、 德國） 層的層，依次為 cryofixation2 h。鮮荔枝樣品 （果皮/漿） 被切成小件 (大約 4  4  8 毫米) 4 室C，並投入乙醇溶液 (13e17 mol/L) 梯度脫水 (1 h /梯度）。在那之後，他們被封存在與玻璃瓶 filled3 h.甘油液 (10 mol/L) 裝在瓶子裡的泡沫了定期刪除使用微量泵，和這些標本一夜之間放置在 20C.第二天標本塗層與 TFM 層又一層的切片機，商會直到 cryofixation 過程 (2 h) 是完整的。後 cryofixation，3e5 組織切片 (20mm），得到如果，從自動對焦和新鮮荔枝樣品使用切片機。這些組織切片放在玻璃幻燈片固定在甲醇30 s，然後用蒸餾水，跟著輕輕地清洗和甲苯胺藍 (0.1 g/L) 5e10 s 染色再清洗一次，空氣乾燥。最後微觀結構的荔枝組織切片 （圍-在配備 CCD RGB 顯微鏡觀察鯉魚漿粕相機 （MACC C71，日本索尼）。

結果 (繁體中文) 2:

果的微觀結構按照重新測量
移植方法（Tironi等人，2007），具有一定的改性音響陽離子。
在20

C，自每個收集的冷凍荔枝樣品（果皮/漿）
儲存時間（1天，60天，180天）被切成小塊
（約448毫米）。然後將這些樣品放置在
試樣板上在切片機的腔室（徠卡CM-
1900，德國，搭載了冷凍系統），在25

℃，然後
包被的組織冷凍培養基（TFM，徠卡顯微
系統公司，德國）通過層層，隨後通過冷凍音響xation為
2小時。新鮮荔枝樣品（果皮/紙漿）切成小
在一個室件（約448毫米）在4

℃，投入
乙醇溶液（13e17摩爾/升）為梯度脫水（1小時/
梯度）。之後，它們被密封在LLED玻璃瓶音響
甘油溶液（10摩爾/升）3小時。在瓶子氣泡
使用微量週期性地取出，並且這些樣品
在20放置過夜

C. 在第二天，將樣品
塗覆TFM層通過層中的切片機的腔室，
直到冷凍音響xation過程（2小時）完成。
CRYO音響xation，3E5組織切片（20後
米
米）獲得
從中頻，AF和新鮮使用切片荔枝樣品。這些
組織切片置於玻片固定的在甲醇中
30秒，然後用蒸餾水輕輕洗滌，接著
用甲苯胺藍（0.1克/升）為5e10 S染色，再次洗滌，並
在空氣中乾燥。最後荔枝組織切片的顯微組織（圍
在配有CCD的RGB顯微鏡觀察鯉魚/漿）
照相機（MACC-C71，索尼，日本）。

結果 (繁體中文) 3:

水果的顯微結構，根據重新—移植法（Tironi et al.，2007），與一些修改fi陽離子。在20C、速凍荔枝樣品（果皮、果肉）收集各存儲時間（1天，60天，180天）被切成小塊（約448毫米）。然後將這些樣品放在在一個切片室的樣品板（徠卡釐米—1900，德國，配備了冷凍系統）在25C，然後塗Tissue Freezing Medium（TFM、徠卡顯微鏡系統有限公司，德國）一層一層，其次是冷凍fi固定2小時新鮮荔枝樣品（果皮、果肉）切成小塊（約448毫米）在一個房間裏，在4、放進乙醇溶液（13e17 mol/L）梯度脫水（1小時/梯度）。之後他們被密封在一個玻璃瓶fi填充甘油溶液（10摩爾/昇）為3小時。氣泡的瓶子定期删除使用微量注射器，這些樣品放置過夜在20在第二天的樣品塗TFM層的切片室，直到冷凍fi固定過程（2小時）完成。低溫fi固定後，3e5組織切片（20M獲得了M如果，用切片機AF和新鮮荔枝樣品。這些組織切片放在載玻片上固定在fi甲醇30秒，然後用蒸餾水輕輕洗滌，其次用甲苯胺藍染色（0.1 g/L）為5E10，再清洗空氣乾燥。最後對荔枝組織的顯微結構進行切片（種植周—鯉魚/漿）在顯微鏡下觀察配備CCD的RGB相機（macc-c71、索尼、日本）。