Concentrations of polyphenols, caffe

Concentrations of polyphenols, caffeine and total free amino acid were determined with routine methods after extracted with deionised water in a boiling bath for 45 min with occasional hand shaking (Liang et al., 2003). The extract was immediately filtered and cooled to room temperature and measured for the concentrations of polyphenols and total free amino acid as previously described (Liang et al., 2003). Water extract was determined by an international standard method (ISO 9768:1994). Briefly, a volume of 50 mL of tea extract prepared as described above was evaporated in dish on boiling water bath to rough dry and further dried in an oven at 103 C to complete dryness and then weighted after cooling down to room temperature in a silicagel desiccator. The composition of free amino acids was measured by HPLC (Waters 600; Waters Corp., Milford, MA, USA) with AccQ Tag column (3.9 mm · 150 mm) and a fluorescence detector after derivatisation with AccQFluor ReagentKit following themanufacturer’sprotocol (Waters Corporation, 1996). Contents of total amino acid in the tea infusions were determined by a spectraphotometric method (Liang et al., 2007). The composition of caffeine and catechins in the extract was determined with a HPLC system (Waters 590; Waters Corp.) equipped with a Hypersil ODS2 C18 column (5 lm, 4.6 mm · 250 mm, 35 C) at 280 nm as previously described (Su et al., 2003). Solvents A (2% acetic acid)andB(acetonitrile)wereruninlineargradientswith A decreasing from 93% to 55% within 20 min and maintained for 5 min thereafter at a rate of 1.4 mL min)1. Concentrations of caffeine and catechins were quantified by their peak areas against those of standards prepared fromauthenticcompounds.Totalnitrogenwasmeasured by Kjeldahl digestion method (Liang et al., 2007).

結果 (中文) 1:

多酚，CA FF EINE和总游离氨基酸的浓度与常规方法测定在沸腾浴中用去离子水萃取，偶尔用手摇动45分钟后（Liang等人，2003）。将萃取液立即过滤的网络连接，并冷却至室温，并测量多酚和如先前所描述的总游离氨基酸的浓度（Liang等人，2003）。水提取物的国际标准方法（：1994 ISO 9768）确定。简要地Y，如上述制备的50毫升茶提取物的体积蒸发皿上沸水浴中以粗燥并进一步干燥以在103？C至完全干燥烘箱中，然后在硅胶冷却至室温后加权干燥器。游离氨基酸的组合物，通过HPLC（Waters 600为测量; Waters公司，米尔福德，MA，USA）用的AccQ Tag列（3.9毫米·150mm）上和a荧光检测器后衍生化AccQFluor ReagentKit以下themanufacturer'sprotocol（Waters公司，1996）。在茶输注总氨基酸的含量用一个spectraphotometric法（Liang等人，2007）。CA FF EINE和在提取物中的儿茶素类的组合物用HPLC系统（沃特斯590; Waters公司）测定280nm处配备为Hypersil ODS2 C18柱（5 LM，4.6毫米·250毫米，35℃）如先前所描述（Su等人，2003）。溶剂A（2％乙酸）且B（乙腈）wereruninlineargradientswith甲减少从93％到20分钟内55％，然后在1.4毫升min的速率）1保持5分钟。CA FF EINE的浓度儿茶素孔定量网络版由它们的峰面积对那些制备fromauthenticcompounds标准。

結果 (中文) 2:

在沸腾的浴缸中用去水萃取45分钟后，偶尔握手，用常规方法测定多酚、咖啡因和完全游离氨基酸的浓度（Liang等人，2003年）。提取物立即过滤并冷却至室温，并测量了上述多酚和完全游离氨基酸的浓度（Liang等人，2003年）。水萃取由国际标准方法（ISO 9768：1994）测定。简单地说，在沸水浴的菜中蒸发出50 mL的茶提取物，在103°C的烤箱中粗干，再干燥，然后冷却至室温后的硅胶干燥器。用HPLC测定游离氨基酸的成分（水600;沃特世公司，米尔福德，马，美国），与AccQ标签柱（3.9毫米 × 150毫米）和荧光探测器后，衍生与AccQFluor试剂Kit后，根据制造商的协议（沃特世公司，1996年）。茶输液中总氨基酸的含量由光谱光度法测定（梁等人，2007年）。使用HPLC系统测定提取物中咖啡因和儿茶素的成分（Waters 590;沃特世公司）配备 Hypersil ODS2 C18 柱（5 lm，4.6 mm = 250 mm，35 C），如前所述，在 280 nm 处（Su等人，2003 年）。溶剂A（2%醋酸）和B（乙酰乙酸）在20分钟内从93%下降到55%，此后以1.4 mL min的速率维持5分钟。咖啡因和儿茶素的浓度由其峰值区域与从真化合物制备的标准进行量化。用Kjeldahl消化法测定全氮（梁等人，2007年）。

結果 (中文) 3:

在沸水中用去离子水萃取45分钟，偶尔握手，然后用常规方法测定多酚、ca ffeine和总游离氨基酸的浓度（Liang等人，2003）。提取物立即过滤并冷却至室温，并测量多酚和总游离氨基酸的浓度，如前所述（Liang等人，2003）。水提取物采用国际标准方法测定（ISO 9768-1994）。Brie fley，将上述制备的50ml茶提取物在沸水浴上的盘中蒸发至粗干，然后在103℃的烘箱中进一步干燥至完全干燥，然后在硅胶干燥器中冷却至室温后称重。使用高效液相色谱法（Waters 600；Waters Corp.，Milford，MA，USA）测定游离氨基酸的组成，使用AccQ标记柱（3.9 mm·150 mm）和荧光检测器，在制造商生产的sprotocol（Waters Corporation，1996）之后使用AccqFlor ReagentKit进行衍生。用分光光度法测定茶液中总氨基酸的含量（Liang等人，2007）。采用高效液相色谱系统（Waters 590；Waters Corp.）测定提取物中的ca ffeine和儿茶素的成分，该系统配备了一个超白细胞ODS2 C18色谱柱（5 lm，4.6 mm·250 mm，35 C），波长为280 nm，如前所述（Su等人，2003）。溶剂A（2%乙酸）和B（乙腈）在20分钟内从93%减少到55%，然后以1.4毫升/分钟的速率保持5分钟）1。ca ffeine和儿茶素的浓度根据其峰面积与由鉴定化合物制备的标准品的峰面积进行定量。总氮通过凯氏消化法进行测量（Liang等人，2007）。