OEG suspensions were prepared as Ruitenberg et al. described. Purified的中文翻譯

OEG suspensions were prepared as Ru

OEG suspensions were prepared as Ruitenberg et al. described. Purified OEGs were seeded onto poly-L-lysine-coated dishes at a density of 1×106 cells in DF-10S. The next day, the medium was replaced with fresh medium containing pcDNA3.1(+)-NT3 or pcDNA3.1(+), and cells were left for 72 h. After that, the OEG cultures were washed with L-15 medium, detached by trypsinization and washed twice in serum-free DMEM/F-12 medium. Next, cells were pelleted bylow-speed centrifugation,carefully resuspended, and diluted in appropriate volume of DMEM/F-12 to obtain the OEG suspension at 50 000 /μL. The viability of OEG suspensions, which was assessed by counting the percentage of dead cells using Trypan blue staining, was >95%.
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結果 (中文) 1: [復制]
復制成功!
OEG 悬浮液准备 Ruitenberg et al.所述。纯化的 OEGs 接种到聚-L-赖氨酸-镀膜的菜肴,密度为 1 × 106 细胞的 DF-10S。第二天,介质被替换用含 pcDNA3.1 () 的新鲜培养基-NT3 或 pcDNA3.1 () 和单元格留给 72 h。之后,OEG 文化是用清水洗净 L-15 中等由 trypsinization 分离和洗过两次在无血清 DMEM/F-12 中等。下一步,单元格是颗粒的保护膜速度离心,仔细再悬浮,并在适当的卷的 DMEM/F-12 获得 OEG 悬浮在 50 000 /μL 稀释。OEG 悬浮液,生存能力是进行评估通过计数使用台盼蓝染色的死细胞的百分比,是 > 95%。
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結果 (中文) 2:[復制]
復制成功!
OEG悬浮液制备为Ruitenberg等。描述。纯化OEGs接种到聚-L-赖氨酸包被的培养皿以1×106个细胞在DF-10S的密度。第二天,将培养基更换为新鲜的含介质的pcDNA3.1(+)-NT3或染pcDNA3.1(+),并且细胞被放置72小时。在此之后,OEG培养液用L-15培养基中,通过胰蛋白酶消化分离,并在无血清的DMEM/F-12培养基洗涤两次。接着,细胞沉淀bylow高速离心,小心悬浮和稀释DMEM/F-12适当的音量,以获得OEG悬挂在50 000 /μL。OEG混悬剂的可行性,这是通过计数死细胞用台盼蓝染色的百分比进行评估,为> 95%。
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結果 (中文) 3:[復制]
復制成功!
制备的卢腾伯格等人OEG悬浮液。描述。纯化的嗅鞘细胞接种到聚-L-赖氨酸包被的菜肴的密度为1×106细胞在df-10s。第二天,培养基含有pcDNA3.1新鲜培养基替换()和pcDNA3.1(-),和神经细胞72 h后,左,OEG培养物的L-15培养基洗涤,用胰酶消化法分离和洗涤两次在无血清的DMEM/F-12培养基。其次,细胞颗粒经济高速离心,仔细的再悬浮和稀释,在DMEM F-12适当体积的50/000/μL. OEG悬浮液的可行性得到OEG悬挂,这是由计数用台盼蓝染色死细胞百分比评估,>95%。
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