KD,iis the distribution coefficient of the oligosaccharide, i. Vc,iis t的中文翻譯

KD,iis the distribution coefficient

KD,iis the distribution coefficient of the oligosaccharide, i. Vc,iis the mean retention elution volume of the oligosaccharide i. Vc,exlis the mean exclusive elution volume probed by dextran (molecular mass 50,000 Da). Vc,permis the mean permeable volume probed by acetone but
determined by UV detector (Aglient 1260, Aglient Technologies, USA) at 280 nm under the same LC condition.
2.4. Separation and purification of oligosaccharides
The oligosaccharide mixture was fractionated by two Superdex Peptide columns operating in series and eluted at a flow rate of 0.4 mL/min with the same elution buffer as for the LC–MS. A refractive index detector (RID) (Aglient 1260, Aglient Technologies, USA) was employed as detector. Four major oligosaccharides in the enzymatic hydrolysate were collected and lyophilised for future structural studies, and their composition was predicted according
to the distribution coefficient of oligosaccharides determined by LC–MS. In order to obtain sufficient samples (up to 15 mg of each oligosaccharide) for structural determination, the purification procedure was performed repeatedly. The purity of each fraction was examined using fluorophore-as-sisted carbohydrate electrophoresis (FACE) according to the method of Oonuki, Yoshida, Uchiyama, and Asari (2005). In brief, each oligosaccharide was labelled by 8 -aminonaphthalene-1,3,6-tri-sul-phonic acid disodium salt. Separation of the labelled oligosaccharides was performed on polyacrylamide gel containing 36% acrylamide in 50 mM Tris–glycine buffer (pH 8.3) at a constant current of 15 mA at 4 °C for 90 min. Detection was performed on a trans-illuminator at 365 nm.
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KD,iis 的低聚糖,即 Vc,iis 的低聚糖的平均滞留洗脱体积分布系数 i.Vc,平均的专属洗脱体积用葡聚糖进行探讨的 exlis (分子量 50,000 Da)。Vc、 permis 平均渗透体积用丙酮进行探讨,但由紫外检测器 (安捷伦 1260,安捷伦科技,美国) 在 280 nm LC 在相同的条件下。2.4.分离和低聚糖 purification低聚糖混合物被分级的经营系列中的两个 Superdex 肽列,并在相同的洗脱缓冲液作为液相色谱 — — 质谱 0.4 毫升/分钟的流速洗脱。作为探测器采用折光检测器 (RID) (安捷伦 1260年、 安捷伦科技、 美国)。酶法水解液中的四个主要寡糖了收集冻为今后的结构研究,并根据预测了它们的组成对低聚糖由液相色谱 — — 质谱确定分布系数。为了获得 sufficient 样品 (达 15 毫克每个低聚糖) 结构的测定,purification 程序进行多次。使用荧光作为强调糖电泳 (FACE) 根据 Oonuki、 Yoshida、 中山教授和细辛 (2005 年) 的方法,研究了各组分的纯度。简单地说,每个低聚糖被贴上标签,8-萘胺-1,3,6-三-南里语音酸二钠盐。对含有 36%丙烯酰胺 50 毫米三 — — 甘氨酸缓冲区 (pH 8.3) 在 15 恒电流中的聚丙烯酰胺凝胶进行标记的低聚糖的分离在 4 ° C 的 90 分钟检测马进行跨照明灯在 365 毫微米。
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KD,IIS分配系数ficient的寡糖,即VC,IIS平均保留洗脱体积的寡糖、VC,exlis平均独家洗脱体积探测由右旋糖酐(分子量50000大)。VC,PERMIS平均渗透体积丙酮但
进行紫外测定的探讨(在1260,在280 nm技术,美国)相同的条件下
2.4 LC。分离纯化fi阳离子寡糖寡糖混合物的两
Superdex肽列系列和洗脱在具有相同的洗脱液的流速为0.4毫升/分钟为LC–女士折射率检测器(RID)分级(在1260,在技术,美国)作为探测器。在酶解液四主要低聚糖进行冻干为未来的结构研究,其组成是根据
的分布系数ficient低聚糖由LC–女士为了获得足够的有效样本fi预测(15毫克每寡糖)结构确定,该fi阳离子的程序进行反复。各组分的纯度用荧光辅助糖电泳检查(面)根据oonuki,吉田,山的方法,和细辛(2005)。总之,每个寡糖标记的8 aminonaphthalene-1,3,6-tri-sul-phonic酸钠盐。该标记的寡糖的分离是在聚丙烯酰胺凝胶中含有36%的丙烯酰胺在50 mM Tris–甘氨酸缓冲液(pH 8.3)进行15 mA电流在4°C 90 min,检测波长为365 nm的跨行
照明上。
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